Instruções de Coleta

• Antes da coleta, fazer a higiene íntima normalmente pela manhã; não realizar ducha ou lavagem vaginal;
• Após o período menstrual, uso de cremes vaginais ou relação sexual, deve-se aguardar pelo menos dois dias para realizar a coleta;
• Para coletar o material para análise, é necessário fazer uma suave raspagem na parede vaginal.
• Depois da coleta, o frasco com material deve ser identificado de forma segura com o nome da paciente.

• Se a lesão estiver na fase de vesícula deve-se romper empregando-se uma agulha esterilizada e o fluido drenado estendido diretamente sobre uma lâmina de vidro adequada para análise;
• Se a lesão já tiver na forma de ulceração seca, devemos umedecer a superfície com gaze ou algodão com solução salina (soro fisiológico) por alguns minutos e então proceder o raspado;
• O material obtido é fixado preferencialmente por dessecação natural (fixado a seco).
• A lâmina e o frasco devem ser identificados de forma segura com o nome da paciente.

• NO ESCARRO:
• Colher nas primeiras horas do dia;
• Após acordar, fazer a higiene oral com escovação dos dentes e língua;
• Ainda em jejum, fazer vários exercícios de respiração profunda;
• Fazer vários exercícios de tosse;
• Evitar colher somente saliva;
• Havendo escassez de material deve-se recorrer à prévia nebulização;
• Depois da coleta, o frasco com material é identificado de forma segura com o nome do paciente.
• Conduzir ao Laboratório o mais breve possível e se o tempo entre a coleta e a chegada ao Laboratório for exceder 3 horas, acondicionar em caixa de isopor com cubos de gelo;
• A sensibilidade do método determina 3 coletas, sendo uma por dia.

• NA URINA:
• O material pode ser colhido em 3 amostras de jato espontâneo;
• Pode ser conservada sob refrigeração a 4ºC e, neste caso, transportada até o Laboratório em caixa de isopor contendo cubos de gelo;

• LAVADO BRÔNQUICO, LÍQUIDO PLEURAL, ASCÍTICO E LÍQÜOR:
• O material colhido é acondicionado em frasco limpo e seco, fornecido à Clínica ou Hospital pelo Laboratório;
• Os frascos devem ser identificados de modo seguro com o nome do paciente;
• Manter o material sob refrigeração a 4º. Centígrados até o envio ao Laboratório em caixa de isopor com cubo de gelo.
• Os esfregaços são elaborados pelo próprio Laboratório.

• A punção aspirativa refere-se ao método de obtenção da amostra a ser examinada pelo uso de uma agulha fina acoplada à seringa, introduzida em órgãos sólidos e, fundamentalmente, também pesquisa células neoplásicas de uma forma mais elaborada.
• Os órgãos comumente puncionados são: glândula mamária, tireóide, pulmão, glândula salivar e tumorações.

• Os materiais destinados ao exame anátomo-patológico podem ser órgãos (peças cirúrgicas) ou fragmentos de tecido (biópsias), obtidos por ressecções cirúrgicas, endoscopias, punções com agulhas de grosso calibre, entre outros;
• Quanto aos fragmentos de biópsia, deve-se ter especial atenção para não apresentar artefatos de compressão produzidos pelo pinçamento demasiado com os instrumentais cirúrgicos e terem dimensões adequadas ao propósito, evitando falta de representatividade;
• Tanto os pequenos fragmentos como as peças cirúrgicas maiores devem ser acondicionadas em frascos de boca larga, volume adequado às dimensões do conteúdo pretendido com formol 10% na quantidade suficiente para cobrir totalmente a peça cirúrgica;
• Alguns frascos contendo formol podem apresentar precipitado branco-leitoso - sais tampões - necessários à manutenção do pH da solução e não indicam prazo de validade vencido.
• Os frascos deverão ser identificados de forma segura com o nome do paciente e preferencialmente terem sua tampa, mesmo as de rosca, lacradas com fita adesiva.
• Os materiais devem ser destinados ao Laboratório, acompanhados de requisição contendo todas as informações clínicas importantes para a elucidação diagnóstica. Amostras ósseas devem se acompanhar de exames radiológicos de imagens.
• O envio do material coletado ao Laboratório não necessita ser de imediato, uma vez que a fixação pelo formol é um processo lento, podendo demorar algumas horas para biópsias pequenas e até dias para peças cirúrgicas maiores. Após fixação, o material ainda pode permanecer no formol por longos períodos.

O laboratório fornece gratuitamente o kit especial para a coleta do material. O kit compõe-se de um tubete especial contendo 1 ml de solução tampão p/ transporte + escovinha própria de haste longa, possuindo ponto frágil para fraturá-la na altura exata, de modo a deixá-la dentro do tubete, permitindo assim o fechamento com a tampa de rosca.

1. COLETA do Colo Uterino e/ou Vagina:

• Não realizar toque, colposcopia ou assepsia prévia.
• A presença de sangramento ou inflamação não altera o resultado.
• No mesmo exame ginecológico a captura híbrida deve ser colhida antes da colpocitologia oncótica.
• Remover o excesso de muco do orifício cervical externo com algodão ou gaze.
• Introduzir 1,0 a 1,5 cm da escovinha no orifício cervical, girar a haste 3 vezes no mesmo sentido, retirar o escovinha, em seguida escovar o ectocérvice e se desejar as paredes vaginais.
• Imediatamente introduzir a escovinha no tubete, mergulhando a extremidade na solução tampão.
• Com a haste dentro do tubete, flexionar lateralmente a haste p/ fraturá-la no ponto fraco previamente determinado.
• Manter a extremidade da escovinha dentro do tubete.
• Fechar bem o tubete com a tampa de rosca.
• Agitar suavemente o tubete para homogeneizar a amostra.
• Identificar a paciente na etiqueta adesiva do tubete.
• Lacrar a tampa de rosca do tubete com fita adesiva.
• Preencher uma requisição com os dados clínicos pertinentes e sítio (s) de coleta (s).

2. COLETA da Vagina, Vulva, Região Perianal, Pênis, Cavidade Oral ou Pele:

• Umedecer a superfície, se necessário com solução fisiológica.
• Em se tratando de mucosa, atritar com movimentos giratórios a extremidade da escovinha na área suspeita. Se a superfície for seca e permitir, deve-se raspar com lâmina de bisturi estéril e com o auxílio da brush colher o material raspado e introduzi-lo no tubete.
• Seguir os passos de 6 a 12 do item acima descrito.

3. BIÓPSIAS:

• Devem ter dimensão menor que 5 mm.
• Devem ser colocadas dentro do tubete com a solução tampão de transporte. Despreze a escovinha e não substitua a solução tampão por formol.
• Seguir os passos de 9 a 12 do primeiro item.

4. CONSERVAÇÃO E VALIDADE DO MATERIAL COLHIDO:

• O material citológico colhido é viável para análise por até 15 dias na temperatura ambiente e por até 3 meses se for congelado.
• Remeter o mais breve possível ao laboratório.
• Em se tratando de biópsia, remeter ao laboratório dentro das primeiras 24 horas para efetuarmos o congelamento p/ transporte.

5. COLETA ÚNICA PARA INVESTIGAR OUTROS PATÓGENOS:

• Com o mesmo material coletado para captura híbrida para o HPV, podemos realizar a captura híbrida para Chlamydia e Gonococo quando a coleta for endocervical ou uretral, investigando assim outros patógenos, possivelmente associados. A captura híbrida pode também ser solicitada isoladamente para a Chlamydia e/ou Gonococo.

Inicialmente recomenda-se ler atentamente o rótulo do frasco de formol para saber se você tem o formol puro ou o formol já pronto para uso.

Caso você possua o frasco de formol a 10%, então está pronto para ser usado e NÃO NECESSITA DILUIÇÃO. Caso você tenha já diluído, despreze a solução preparada, pois ela não irá preservar os tecidos, mas sim permitirá a autólise que dificultará ou impedirá o exame dos tecidos.

Caso você possua o frasco de formol a 37% ou 40%, dito formol puro, então necessitará diluí-lo conforme o seguinte esquema:

1 litro formol 37% ou 40% (puro)    +    9 litros de água de torneira = bombona com capacidade de 10 litros.

A adição na bombona de barras de giz é recomendável visando manter a solução neutra por longos períodos, evitando deste modo a formação de ácido fórmico à partir do formol, o que também deteriora o tecido que se pretende conservar para o exame anátomo-patológico.

O formol penetra lentamente no fragmento de tecido ou na peça cirúrgica, cerca de um milímetro por hora, portanto grandes peças habitualmente são incisadas para permitir que o formol preencha mais rapidamente seu interior.

Os tecidos podem permanecer por tempo praticamente indeterminado submersos no formol a 10% neutralizado com sais de carbonato de cálcio (=giz).